Salute e malattia

Western Blotting: Guida Completa per Identificazione Proteine

Principio

Western blot: tecnica nota per identificare proteine specifiche isolate da tessuto. Proteine separate per carica e peso su gel SDS-poliacrilammide, trasferite su membrana nitrocellulosa. Anticorpi marcati legano proteina bersaglio → visualizzazione su pellicola raggi X o colorazione proteina-specifica. Risultato: bande scure = presenza proteina identificata. Articolo focalizzato su metodologia base per laboratorio qualificato ricerca proteica complessa.

Materiale Necessario

  • Gel SDS-poliacrilammide (SDS-PAGE) con proteine separate
  • Membrana nitrocellulosa
  • Acqua distillata
  • Buffer trasferimento (30g Tris, 144g Glicina, 200ml metanolo in 1L acqua)
  • Carta filtro Whatman 3mm
  • Spugna da laboratorio
  • Camera trasferimento Western blot
  • Alimentatore da laboratorio
  • Frigo da laboratorio
  • Agitatore da laboratorio
  • Soluzione TBS (24,2g Tris Base, 80g NaCl in 1L acqua)
  • Soluzione bloccante (5% latte scremato in polvere in TBS)
  • Soluzione anticorpo primario
  • Soluzione coniugato anticorpo marcato
  • Soluzione substrato fosfatasi alcalina con nitro blue tetrazolium
  • PBS (fosfato buffer salino)
  • Gel-imager box

1. Trasferimento Proteine su Membrana Nitrocellulosa

  1. Prepara membrana: Immersa acqua distillata 2 min, poi in buffer trasferimento 5 min.
  2. Assembla "sandwich": Spugna/carta filtro/SDS-PAGE/membrana nitrocellulosa/carta filtro/spugna. Allineamento: membrana verso anodo, gel verso catodo dentro camera.
  3. Aggiungi buffer: Sandwich sommerso. Camera in frigo a 4°C.
  4. Imposta alimentatore: Direzione trasferimento verso anodo (cavo rosso). Proteine grandi migrano prima. Alimentatore controlla velocità. 30V, 40mA per trasferimento overnight.
  5. Smonta alimentatore: Dopo trasferimento. Non toccare buffer né rimuovere sandwich con alimentatore collegato.
  6. Incuba membrana in soluzione bloccante 2h: Proteine bloccante assorbono dove no proteine target. Impedisce legame anticorpi aspecifico.

2. Legame Anticorpo

  1. Incuba con anticorpo primario + agitatore: Membrana completamente sommersa ≥1h (accettabile overnight).
  2. Lavaggi: 4 lavaggi 10 min con TBS per rimuovere anticorpo non legato.
  3. Incuba con coniugato anticorpo marcato + agitatore: ≥1h. Coniugato legato a fosfatasi alcalina. Mix enzima-anticorpo riconosce e lega primo anticorpo.

3. Rilevazione Proteina

  1. Risciacquo PBS 10 min ×4: Rimuove resto coniugato.
  2. Incuba in substrato fosfatasi alcalina finché appaiono bande: Colorante lega complesso anticorpo-antigene-proteina → banda scura. Processo immediato o fino a 30 min.
  3. Avvolgi membrana in cellophane e poni su gel-imager: Visualizza risultati. Gel-imager fotografa bande su membrana Western blot.