Salute e malattia

Guida all'assay FRET: principi, applicazioni e protocollo

Occorrente

  • Costrutti proteina-interesse/reporter per ogni proteina testata
  • Blocco piastra a 96 pozzetti
  • Lettore piastra a 96 pozzetti
  • Buffer di reazione (generalmente base Tris- o fosfato-salina)
  • Enzima di coniugazione (se necessario)

Istruzioni

  1. Preparazione costrutti. Generare o preparare costrutti di fusione di ogni proteina d'interesse, ciascuna legata a una molecola a trasmissione di fluorescenza come GFP (proteina fluorescente verde), rodamina o BODIPY (boro-dipirrometene).

  2. Lunghezze d'onda. Determinare lunghezze d'onda di assorbimento ed emissione di ogni componente fluorescente e dell'assay complessivo. (Es.: se l'assay misura trasferimento GFP→rodamina, l'assorbimento in ingresso è quello del GFP (488 nm) e l'emissione rilevata è quella della rodamina (595 nm)).

  3. Buffer di reazione. Creare buffer appropriato per l'esperimento, in base alle proprietà biochimiche delle proteine d'interesse. Spesso si usa buffer TRIS con cloruro di calcio e 0,05% Tween-20. Concentrazioni e componenti specifici si trovano in letteratura su reazioni e condizioni simili.

  4. Miscelazione e incubazione. Mescolare le due proteine reporter-coniugate a varie concentrazioni nel buffer di reazione, aliquotare 50-200 µl per pozzetto. Aggiungere enzima di coniugazione (es. sortasi) se appropriato. Per assay end-point: incubare a temperatura ambiente (o temperatura ottimale dell'enzima) per un tempo determinato, poi leggere al lettore. Per assay cinetico: procedere direttamente alla lettura (vedi sotto).

  5. Lettura e analisi. Inserire la piastra nel lettore. Creare nuova pagina esperimento e accedere al menu impostazioni. Inserire lunghezze d'onda di assorbimento (eccitazione) ed emissione corrette, selezionare i pozzetti da leggere. Per esperimento cinetico: impostare durata e intervallo letture (es. ogni 10 min). Avviare lettura. Analizzare dati con funzioni grafiche di Excel o altri software (es. GraphPad).