Salute e malattia
La colorazione acido-alcol-resistente è una procedura di laboratorio per identificare batteri con rivestimento ceroso sulla parete cellulare che si colorano male con il Gram, principalmente Mycobacterium e Nocardia. Efficace per differenziare questi batteri da quelli non acido-resistenti, ma insufficiente per distinguere le singole specie.
Lo striscio viene fissato a caldo, colorato con fucsina fenicata (fenolo + fucsina), riscaldato, risciacquato, decolorato con soluzione acida, risciacquato, controcolorato con blu di metilene, risciacquo finale e asciugatura. Al microscopio i batteri acido-resistenti appaiono rossi, gli altri blu.
Non richiede riscaldamento dopo la colorazione iniziale poiché le concentrazioni di fenolo e fucsina sono modificate per aumentare l'efficacia. Procedure e reagenti restano uguali.
Usano fluorocromi come colorante e permanganato di potassio come controcolorante. I fluorocromi fanno fluorescere i batteri acido-resistenti; il permanganato crea sfondo scuro impedendo la fluorescenza di altro materiale.
I batteri acido-resistenti possiedono acidi micolici sulla parete cellulare che legano strettamente i coloranti. Una volta legati, resistono alla rimozione della soluzione acida. Il controcolorante dà contrasto tra batteri e sfondo.
Batteri medicalmente importanti: Mycobacterium tuberculosis (tubercolosi), Mycobacterium leprae (lebbra), Nocardia asteroides (nocardiosi).
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